Roy, L. & Chauve, CM Reseña histórica del género Dermanyssus Dugès, 1834 (Acari: Mesostigmata: Dermanyssidae). Parásito 1487–100 (2007).
Sigognalt Flochlay, A. et al. Ácaro rojo de las aves de corral (Dermanyssus gallinae) infestación: una enfermedad parasitológica de amplio impacto que sigue siendo un desafío importante para la industria de la puesta de huevos en Europa. Vectores de parásitos 10357 (2017).
Sparagano, O. et al. Prevalencia y cifras clave del ácaro rojo avícola Dermanyssus gallinae Infecciones en sistemas de granjas avícolas. Exp. aplicación Acarol. 483–10 (2009).
Kasburg, CR et al. Actividad de algunos aislamientos brasileños de hongos entomopatógenos contra el ácaro rojo de las aves Dermanyssus gallinae De Geer (Acari: Dermanyssidae). Rev. Brás. Ciência Av.Ãcola 18457–460 (2016).
Mottet, A. & Tempio, G. Producción avícola mundial: estado actual y perspectivas y desafíos futuros. Poult del mundo. ciencia j 73245–256 (2019).
Valiente Moro, C. et al. Papel vectorial de algunos ácaros dermanyssoid (Acari, Mesostigmata, Dermanyssoidea). Parásito 1299–109 (2005).
Pritchard, J. et al. Comprender la biología y el control del ácaro rojo de las aves Dermanyssus gallinae: una revisión. Patol aviar. 44143–153 (2015).
Raele, DA et al. primer informe de Coxiella burnetii y Borrelia burgdorferi sensu lato en aves de corral ácaros rojos, Dermanyssus gallinae (Mesostigmata, Acari), relacionado con brotes urbanos de dermatitis en Italia. N. Microbios N. Infectar. 23103–109 (2018).
George, DR et al. ¿Debe el ácaro rojo de las aves Dermanyssus gallinae ser de interés más amplio para la ciencia médica y veterinaria? Vectores de parásitos 8178 (2015).
Valiente Moro, C. et al. El ácaro rojo de las aves (Dermanyssus gallinae): un potencial vector de agentes patógenos. Exp. aplicación Acarol. 4893–104 (2009).
Cocciolo, G. et al. Evidencia de transmisión vectorial de Salmonella enterica enterica serovar Gallinarum y enfermedad tifoidea aviar mediada por el ácaro rojo aviar, Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778). Vectores de parásitos 13513 (2020).
Sommer, D. et al. Rolle der Roten Vogelmilbe (Dermanyssus gallinae) bei der Ãoebertragung von aviärem Influenza-A-Virus. Tierärztliche Praxis Ausg G Grosstiere Nutztiere 4426–33 (2017).
Brännström, S. et al. Estudio experimental sobre la posible transmisión de la bacteria Erysipelothrix rhusiopathiae a los pollos por el ácaro rojo de las aves, Dermanyssus gallinae. Exp. aplicación Acarol. 50299–307 (2009).
De Luna, CJ et al. El ácaro rojo de las aves Dermanyssus gallinae como potencial portador de enfermedades transmitidas por vectores. Ana. Academia de Nueva York. ciencia 1149255–258 (2008).
Huang, Y. et al. Ensamblaje de novo y descubrimiento de genes relacionados con la digestión sanguínea en el transcriptoma de Dermanyssus gallinae (Ácaros: Dermanyssidae). Veterinario. Parasitol. 286109246 (2020).
Schicht, S. et al. Análisis completo del transcriptoma del ácaro rojo de las aves. Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778). Parasitología 141336–346 (2013).
Bartley, K. et al. Análisis transcriptómico del ácaro rojo de las aves, Dermanyssus gallinaeen todas las etapas del ciclo de vida. Genómica BMC 22248 (2021).
Fujisawa, S. et al. Dinámica del transcriptoma de ácaros rojos de aves de corral alimentadas con sangre y hambrientas, Dermanyssus gallinae. Parasitol. En t. 78102156 (2020).
Cuerno, M. et al. Digestión de hemoglobina en garrapatas que se alimentan de sangre: mapeo de una vía multipeptidasa mediante proteómica funcional. química Biol. dieciséis1053–1063 (2009).
KaÅ¡ný, M. et al. Capítulo 4 peptidasas de trematodos. Adv. Parasitol. 69205–297 (2009).
Sojka, D. et al. Perfilado de enzimas proteolíticas en el intestino de la garrapata Ixodes ricinus revela una red conservada evolutivamente de aspártico y cisteína peptidasas. Vectores de parásitos 17 (2008).
Perner, J. et al. La adquisición de hemo exógeno es esencial para la reproducción de la garrapata. eLife 5e12318 (2016).
Perner, J. et al. Biología del hemo en parásitos metazoarios: ‘El lado positivo del hemo’. Tendencias Parasitol. 35213–225 (2019).
Blackwell, T. K et al. Señalización TOR en Caenorhabditis elegans desarrollo, metabolismo y envejecimiento. Genética 213329–360 (2019).
Kozelková, T. et al. Caracterización funcional de la vía de señalización de la insulina en la garrapata dura Ixodes ricinus. garrapatas garrapatas. Dis nacido. 12101694 (2021).
Nunn, F. et al. Un método mejorado para la alimentación in vitro de hembras adultas Dermanyssus gallinae (ácaro rojo de las aves) utilizando membrana Baudruche (piel de batidor de oro). Vectores de parásitos 13585 (2020).
Liu, Q. et al. Caracterización de Torin2, un inhibidor ATP-competitivo de mTOR, ATM y ATR. Cáncer Res. 732574–2586 (2013).
Jones, AK Genomics, canales iónicos activados por ligando cys-loop y nuevos objetivos para el control de plagas de insectos y vectores. actual Opinión ciencia de los insectos 301–7 (2018).
Meriney, Dakota del Sur y Fanselow, Estados Unidos Receptores ionotrópicos. (Transmisión sináptica, Elsevier Academic Press, Cambridge, MA, 2019).
Raymond-Delpech, V. et al. Canales iónicos: dianas moleculares de insecticidas neuroactivos. inversor Neurosci. 5119–133 (2005).
Ortells, MO & Lunt, GG Historia evolutiva de la superfamilia de receptores de canales iónicos controlados por ligandos. Tendencias Neurosci. 18121-127 (1995).
Jones, AK & Sattelle, DB Diversity Insect Nicotinic Acetylcholine Receptor Subunits. En: Thany, SH (eds) Receptores nicotínicos de acetilcolina de insectos. Avances en Medicina Experimental y Biología. vol 683, 25–43 (Springer, Nueva York, NY, 2010).
Buckingham, SD et al. Receptores GABA de insectos: empalme, edición y selección de antiparasitarios e insecticidas. mol. Farmacol. 68942–951 (2005).
Gisselmann, G. et al. Dos ADNc que codifican canales iónicos activados por histamina en D. melanogaster. Nat. Neurosci. 511-12 (2001).
Zheng, Y. et al. Identificación de dos novelas. Drosophila melanogaster subunidades del canal de cloruro controladas por histamina expresadas en el ojo. J. Biol. química 2772000–2005 (2002).
Redhai, S. et al. Un sensor de zinc intestinal regula la ingesta de alimentos y el crecimiento del desarrollo. Naturaleza 580263–268 (2020).
Wolstenholme, AJ Canales de cloruro controlados por glutamato. J. Biol. química 28740232–40238 (2012).
Atif, M. et al. Los efectos de los insecticidas en dos variantes de empalme del receptor del canal de cloruro controlado por glutamato del principal vector de la malaria, Anopheles gambiae. Hermano J. Pharmacol. 177175–187 (2019).
Lamassiaude, N. et al. Las dianas moleculares de la ivermectina y el lotilaner en el piojo humano Pediculus humanus humanus: nuevas perspectivas para el tratamiento de la pediculosis. Patograma de PLOS. 17e1008863 (2021).
Dermauw, W. et al. La familia de genes de canales iónicos dependientes del ligando cys-loop de Tetranychus urticae: Implicaciones para la toxicología de los acaricidas y una nueva mutación asociada con la resistencia a la abamectina. Bioquímica de insectos. mol. Biol. 42455–465 (2012).
Hibbs, RE & Gouaux, E. Principios de activación y permeación en un receptor Cys-loop selectivo de aniones. Naturaleza 47454–60 (2011).
Hultmark, D. Drosophila inmunidad: caminos y patrones. actual Opinión inmunol. 1512-19 (2003).
Nishide, Y. et al. Diafonía funcional a través de las vías IMD y Toll: información sobre la evolución de las cascadas inmunitarias incompletas. proc. R. Soc. B Biol. ciencia 28620182207 (2019).
Shafee, TMA et al. Evolución convergente de la secuencia, estructura y función de las defensinas. Celúla. mol. Ciencias de la vida 74663–682 (2016).
De Gregorio, E. Las vías Toll e Imd son los principales reguladores de la respuesta inmune en Drosophila. EMBÓ J. 212568–2579 (2002).
Wang, Y. & Zhu, S. La expansión de la familia de genes de defensina en la garrapata Ixodes escapularis. desarrollo compensación inmunol. 351128–1134 (2011).
Molloy, SS et al. Tráfico intracelular y activación de la furina proproteína convertasa: localización en la TGN y reciclaje desde la superficie celular. EMBÓ J. 1318-33 (1994).
Ricklin, D. et al. Complemento: un sistema clave para la vigilancia inmunológica y la homeostasis. Nat. inmunol. 11785–797 (2010).
Blandin, SA et al. Respuestas antipalúdicas en Anopheles gambiae: de una proteína similar al complemento a una vía similar al complemento. Microbio huésped celular 3364–374 (2008).
Shokal, U. & Eleftherianos, I. Evolución y función de las proteínas que contienen tioéster y el sistema del complemento en la respuesta inmune innata. inmunol frontal. 8759 (2017).
Sekiguchi, R. & Nonaka, M. Evolución del sistema del complemento en protostomes revelada por el análisis transcriptómico de novo de seis especies de Arthropoda. desarrollo compensación inmunol. 5058–67 (2015).
Buresova, V. et al. La genómica funcional de las proteínas que contienen tioésteres de garrapatas revela el antiguo origen del sistema del complemento. J. Inmunidad innata. 3623–630 (2011).
Schneider, D. et al. Identificación de los productos del gen de Drosophila necesarios para la fagocitosis de Candida albicans. PLoS Biol. 4e4 (2005).
Fogaça, AC et al. Sistema inmunológico de garrapatas: lo que se sabe, las interconexiones, las brechas y los desafíos. Frente. inmunol. 12628054 (2021).
Bronkhorst, AW & van Rij, RP Lo largo y lo corto de la defensa antiviral: inmunidad basada en ARN pequeño en insectos. actual Opinión Virol. 719–28 (2014).
Han, Q. et al. Mecanismo y función de la interferencia de ARN antiviral en ratones. mBio 11e03278-19 (2020).
Müller, S. et al. La inmunidad mediada por ARNi proporciona una fuerte protección contra el virus de la estomatitis vesicular de ARN de cadena negativa en Drosophila. proc. Academia Nacional. ciencia EE.UU 10719390–19395 (2010).
Bronkhorst, AW et al. El virus de ADN Invertebrate iridiscent virus 6 es un objetivo de la maquinaria de ARNi de Drosophila. proc. Academia Nacional. ciencia EE.UU 109E3604-E3613 (2012).
Chen, W. et al. Caída del gen RNAi en el ácaro rojo de las aves de corral, Dermanyssus gallinae (De Geer 1778), una herramienta para la genómica funcional. Vectores de parásitos 1457 (2021).
Marqués, JT et al. Loqs y R2D2 actúan secuencialmente en la ruta del siRNA en Drosophila. Nat. Estructura. mol. Biol. 1724-30 (2009).
Dowling, D. et al. Origen filogenético y diversificación de genes de la vía RNAi en insectos. Genoma Biol. Evolución 83784–3793 (2017).
Liu, Q. et al. El análisis comparativo de los genomas de los ácaros revela una selección positiva para la adaptación de la dieta. común Biol. 4668 (2021).
Sojka, D. et al. Nuevos conocimientos sobre la maquinaria de la digestión de la sangre por garrapatas. Tendencias Parasitol. 29276–285 (2013).
Franta, Z. et al. Dinámica del sistema proteolítico digestivo durante la alimentación con sangre de la garrapata dura Ixodes ricinus. Vectores de parásitos 3119 (2010).
Santamaría, ME et al. Proteasas digestivas en cuerpos y heces de la araña roja, Tetranychus urticae. J. Fisiol de insectos. 7869–77 (2015).
Nisbet, AJ & Billingsley, PF Un estudio comparativo de las enzimas hidrolíticas de ácaros ectoparásitos y de vida libre. En t. J. Parasitol. 3019–27 (2000).
Franta, Z. et al. irCL1: la catepsina L hemoglobinolítica de la garrapata dura, Ixodes ricinus. En t. J. Parasitol. 411253–1262 (2011).
Hartmann, D. et al. Múltiples isoenzimas de leguminosas en garrapatas. En t. J. Parasitol. 48167–178 (2018).
Mul, M. et al. Métodos de control para Dermanyssus gallinae en sistemas para gallinas ponedoras: resultados de un seminario internacional. Poult del mundo. ciencia j sesenta y cinco589–600 (2019).
Balashov, YS Interacción entre los artrópodos chupadores de sangre y sus anfitriones, y su influencia en el potencial vector. año Rev. Entomol. 29137-156 (1984).
DeLoach, JR & DeVaney, JA Ácaro de las aves del norte, Ornithonyssus Sylviarum (Acari: Macronyssidae), ingiere grandes cantidades de sangre de gallina Leghorn blanca1. J.Med. Entomol. 18374-377 (1981).
Filimonova, SA Aspectos morfológicos de la digestión sanguínea en un ácaro parásito Bakericheyla chanayi. Estructura de artrópodos. desarrollo 42265–276 (2013).
Hajdusek, O. et al. El hierro de las garrapatas y el metabolismo del hemo: nuevo objetivo para una intervención contra las garrapatas. Garrapatas Enfermedad transmitida por garrapatas. 7565–572 (2016).
Hajdusek, O. et al. La eliminación de proteínas involucradas en el metabolismo del hierro limita la reproducción y el desarrollo de las garrapatas. proc. Academia Nacional. ciencia EE.UU 1061033–1038 (2009).
Perner, J. et al. Distribución somática independiente de hemo y hierro en garrapatas. actual Opinión ciencia de los insectos 51100916 (2022).
Gorman, MJ Homeostasis del hierro en insectos. año Rev. Entomol. 6851–67 (2023).
Masuda, T. et al. La primera estructura cristalina de ferritina de crustáceos que es un tipo híbrido de ferritina H y L. Ciencia de las proteínas 271955–1960 (2018).
Zhao, Y. et al. Clonación, expresión y función de ferritinas en la garrapata Haemaphysalis flava. Garrapatas Enfermedad transmitida por garrapatas. 13101892 (2022).
Xu, X. et al. Dos ferritinas de Dermanyssus gallinae: caracterización y evaluación in vivo como antígenos protectores. Manejo de plagas ciencia 78561–571 (2021).
Perner, J. et al. La glutatión S-transferasa inducible (IrGST1) de la garrapata Ixodes ricinus es una proteína de unión al hemo. Bioquímica de insectos. mol. Biol. 9544–54 (2018).
Palmer, WJ & Jiggins, FM La genómica comparativa revela los orígenes y la diversidad de los sistemas inmunológicos de los artrópodos. mol. Biol. Evolución 322111–2129 (2015).
Simpson, SD et al. El proyecto de genoma y transcriptoma del cangrejo herradura atlántico, limulus polifemo. En t. J. Genómica 20171–14 (2017).
Zhou, Y. et al. El borrador del genoma del cangrejo herradura Taquipleo tridentato revela su escenario evolutivo y su inmunidad innata bien desarrollada. Genómica BMC 21137 (2020).
Sottrup-Jensen, L. α-Macroglobulinas: estructura, forma y mecanismo de formación de complejos de proteinasa. J. Biol. química 26411539–11542 (1989).
Saravanan, T. et al. Clonación molecular, estructura y variantes de empalme de la región del cebo de α2-macroglobulina de la garrapata blanda Ornithodoros moubata. Bioquímica de insectos. mol. Biol. 33841–851 (2003).
Buresova, V. et al. IrAM: una macroglobulina α2 de la garrapata dura Ixodes ricinus: caracterización y función en la fagocitosis de un patógeno potencial Chryseobacterium indologenes. desarrollo compensación inmunol. 33489–498 (2009).
Brauneis, MD y col. La velocidad de muerte acaricida del fluralaner administrado por vía oral contra los ácaros rojos de las aves de corral (Dermanyssus gallinae) en gallinas ponedoras y su impacto en la reproducción de los ácaros. Vectores de parásitos 10594 (2017).
Xu, X. et al. Eficacia acaricida de las lactonas macrocíclicas administradas por vía oral contra el ácaro rojo de las aves.Dermanyssus gallinae) en pollitos y sus impactos en la reproducción de ácaros y la digestión de la harina de sangre. Parásitos y vectores 12345 (2019).
Guerrini, A. et al. Evaluación de la eficacia acaricida de fipronil y phoxim en poblaciones de campo de Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778) de granjas avícolas ornamentales en Italia. Veterinario. ciencia 9486 (2022).
Nakatani, Y. et al. Modulación de la ivermectina de los canales de cloruro sensibles al pH en las larvas de gusanos de seda de Bombyx Mori. pesticida Bioquímica Fisiol. 1261–5 (2016).
Burgess, STG et al. Borrador del ensamblaje del genoma del ácaro rojo de las aves de corral, Dermanyssus gallinae. Microbiol. recurso anunciar 7e01221-18 (2018).
Ribeiro, JMC et al. Una visión del sialoma de la mosca que muerde la rana, Corethrella appendiculata. Bioquímica de insectos. mol. Biol. 4423–32 (2014).
Birol, I. et al. Ensamblaje del transcriptoma de novo con ABySS. Bioinformática 252872–2877 (2009).
Grabherr, MG et al. Ensamblaje completo del transcriptoma a partir de datos de RNA-Seq sin un genoma de referencia. Nat. Biotecnología. 29644–652 (2011).
Huang, X. & Madan, A. CAP3: un programa de ensamblaje de secuencias de ADN. Genoma Res. 9868–877 (1999).
Karim, S. et al. Una visión profunda del Sialotranscriptoma de la garrapata de la costa del golfo, Amblyomma maculatum. Más uno 6e28525 (2011).
Nielsen, H. et al. Enfoques de aprendizaje automático para la predicción de péptidos señal y otras señales de clasificación de proteínas. Ing. Proteínas Des. sel. 123–9 (1999).
Sonnhammer, EL et al. Un modelo oculto de Markov para predecir hélices transmembrana en secuencias de proteínas. proc. En t. Conf. Intel. sist. mol. Biol. 6175-182 (1998).
Hansen, JE et al. NetOglic: predicción de sitios de O-glicosilación de tipo mucina según el contexto de la secuencia y la accesibilidad de la superficie. Glicoconj. j 15115-130 (1998).
Katoh, K. et al. Servicio en línea MAFFT: alineación de secuencias múltiples, selección de secuencias interactivas y visualización. Breve. Bioinforma. 201160–1166 (2019).
Kearse, M. et al. Geneious Basic: una plataforma de software de escritorio integrada y extensible para la organización y análisis de datos de secuencia. Bioinformática 281647–1649 (2012).
Castresana, J. Selección de bloques conservados de múltiples alineaciones para su uso en análisis filogenético. mol. Biol. Evolución 17540–552 (2000).
Trifinopoulos, J. et al. W-IQ-TREE: una herramienta filogenética en línea rápida para el análisis de máxima verosimilitud. Ácidos Nucleicos Res. 44W232–W235 (2016).
Kalyaanamoorthy, S. et al. ModelFinder: selección rápida de modelos para estimaciones filogenéticas precisas. Nat. Métodos 14587–589 (2017).
Ronquist, F. et al. MrBayes 3.2: inferencia filogenética bayesiana eficiente y elección de modelo en un gran espacio modelo. sist. Biol. 61539–542 (2012).
Miller, MA et al. Creando el portal científico CIPRES para la inferencia de grandes árboles filogenéticos, Taller de entornos informáticos de puerta de enlace (GCE). págs. 1-8 (Nueva Orleans, LA, EE. UU., 2010).
Moos, M. et al. Los metabolitos crioprotectores se obtienen tanto de la dieta externa como de las reservas macromoleculares internas durante la reprogramación metabólica para la tolerancia a la congelación en la mosca drosófila. Chymomyza costata Metab. 12163 (2022).
Å kodová-Sveráková, I. et al. Metabolismo altamente flexible del protista euglenozoario marino Diplonema papilatum. BMC Biol. 19251 (2021).
Scarpassa, VM et al. Una visión del sialotranscriptoma y el viroma de anofelinos amazónicos. Genómica BMC 20166 (2019).
Langmead, B. & Salzberg, SL Alineación rápida de lectura con intervalos con Bowtie 2. Nat. Métodos 9357–359 (2012).
Nielsen, H. Predicción de proteínas secretoras con SignalP. Métodos Mol. Biol. 161159–73 (2017).
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